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全血pH環(huán)境對紅細(xì)胞膜流動性和膜蛋白的影響

高美霞吳敏慧紀(jì)云鵬蔡莉王泰瑞楊瑩梁文飚

【作者單位】:江蘇省血液中心;

《中國醫(yī)藥指南》2011年13期

【摘要】:

目的:

研究全血紅細(xì)胞胞外pH環(huán)境對紅細(xì)胞膜流動性和膜蛋白的影響。

方法:

將全血紅細(xì)胞懸浮在不同pH值的ACD-B保養(yǎng)液中,分別在4、8和24h,利用熒光探針1,6-二苯基-1,3,5-己三烯(DPH)和SDS-PAGE電泳檢測紅細(xì)胞膜流動性及紅細(xì)胞膜蛋白;利用透射電鏡觀察紅細(xì)胞形態(tài);利用比色法檢測紅細(xì)胞上清中游離血紅蛋白(FHb)。

結(jié)果:

除了環(huán)境pH在6.8的實(shí)驗(yàn)組外,其余各組的紅細(xì)胞的偏振度、微黏度、Band3蛋白、紅細(xì)胞形態(tài)和FHb與正常對照組存在差異性顯著。

結(jié)論:

全血pH環(huán)境可影響紅細(xì)胞膜流動性和膜蛋白的表達(dá),可對紅細(xì)胞的功能產(chǎn)生影響。


紅細(xì)胞懸液由全血制備而來,是目前臨床輸血中使用多的紅細(xì)胞類血液制劑。本研究探討了全血紅細(xì)胞用于MAP紅懸液制備前,其細(xì)胞外pH和作用時(shí)間對紅細(xì)胞膜流動性、膜蛋白和形態(tài)的影響,為探討某些特殊情況的血液(如不足量血)制備紅細(xì)胞懸液的應(yīng)用潛能提供依據(jù)。

1材料與方法

1.1儀器及試劑

HITACHI KY2000型半自動生化分析儀、JEM-1010透射電鏡、島津RF-540型熒光分光光度計(jì)、NanoDropND-1000微量紫外可見分光光度計(jì)、Bio-Rad電泳儀及QuantityOne分析軟件;ACD-B全血保養(yǎng)液為山東威高公司產(chǎn)品,1,6-二苯基-1,3,5-己三烯(diphenyl-hexatriene,DPH)為Sigma公司產(chǎn)品,標(biāo)準(zhǔn)分子量蛋白由MBI公司生產(chǎn),游離血紅蛋白測定試劑由南京生物建成公司提供。

1.2方法

1.2.1紅細(xì)胞在不同pH值環(huán)境的處理

取常規(guī)的ACD-B全血保養(yǎng)液,通過緩慢滴加0.1mol/LNaOH制備成不同pH值(pH分別為5.0、5.6、6.2、6.8和7.4)的全血保養(yǎng)液。隨機(jī)選擇6名知情同意的相同血型健康獻(xiàn)血者、分別采集5mL肝素抗凝全血;立即將6份同型全血混合以減少個(gè)體差異,4℃條件下以等滲PBS(pH7.4)緩沖液,2000g離心10min,洗滌3次,稱重壓積紅細(xì)胞,將洗滌紅細(xì)胞均分6份,1份為對照,5份按紅細(xì)胞和全血保養(yǎng)液的體積比為4:6的比例,懸浮在不同pH值的ACD-B全血保養(yǎng)液中,分別處理4h、8h和24h后。

1.2.2紅細(xì)胞膜樣品的制備

低滲溶血法制備紅細(xì)胞膜,實(shí)驗(yàn)組和對照組分別取0.5mL壓積紅細(xì)胞,PBS反復(fù)洗滌3次,用0.01mol/L tris-Hcl溶血破膜;然后以10000r/min離心15min,反復(fù)洗滌3次后的乳白色提取物即為紅細(xì)胞膜樣品,所有操作均在4℃條件下進(jìn)行,ND-1000微量紫外可見分光光度計(jì)測定紅細(xì)胞膜蛋白濃度。

1.2.3紅細(xì)胞膜蛋白SDS-PAGE電泳

測定紅細(xì)胞膜蛋白濃度,取20ug蛋白樣品進(jìn)行SDS-PAGE電泳,考馬斯亮藍(lán)染色,QuantityOne軟件分析紅細(xì)胞膜蛋白的組成。

1.2.4紅細(xì)胞膜流動性的檢測

采用文獻(xiàn)方法。采用熒光偏振法檢測熒光偏振度并計(jì)算出紅細(xì)胞膜的微黏度。用四氫呋喃作溶劑配制2×10-3mol/L的熒光探針DPH儲存液,于棕色瓶中4℃保存。臨用前用等滲PBS稀釋為2×10-6mol/L的工作液,取2mL紅細(xì)胞膜蛋白(蛋白濃度0.03g/L),加入2mL DPH工作液,37℃溫育30min,用熒光分光光度計(jì),測定其熒光偏振度P(激光波長362nm,發(fā)射波長432nm激發(fā)狹縫10nm,發(fā)射狹縫10nm)。利用P與微黏度(η)的定量關(guān)系計(jì)算出紅細(xì)胞膜的微黏度。

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其中I-vv為起偏器與檢偏器光軸均在垂直方向時(shí)的熒光強(qiáng)度,I-VH為起偏器光軸在垂直方向,檢偏器光軸在水平方向時(shí)的熒光強(qiáng)度I-vv為二者光軸均在水平方向的熒光強(qiáng)度,I-HV為起偏器光軸在水平方向、檢偏器光軸在垂直方向的熒光強(qiáng)度,G為校正因子,G=(I-HV)/(I-HH)。

1.2.5上清FHb濃度的測定

分別在4h、8h和24h檢測實(shí)驗(yàn)組和對照組上清中FHb濃度。

1.2.6紅細(xì)胞膜形態(tài)的觀察

取1mm見方的紅細(xì)胞團(tuán)塊,用2.5%戊二醛和1%鋨酸固定后,經(jīng)脫干、墊入、分割、染色,置于電鏡下觀察、拍片記錄。

1.2.7統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

數(shù)據(jù)采用SPSS15.0進(jìn)行重復(fù)測量數(shù)據(jù)分析。

2結(jié)果

2.1不同pH值處理后,紅細(xì)胞膜熒光偏振度、微黏度和紅細(xì)胞上清中FHb濃度見圖1~3。

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圖1中,0h與4h和0h與8h處理組中,除pH=6.8組外,各組的熒光偏振度有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);0h與24h處理組中,各組的熒光偏振度均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);4h與8h處理組中,除pH為5.0和5.6組外各組的熒光偏振度有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);4h與24h處理組均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);8h與24h處理組中除pH為5.0和5.6組外均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。

圖2中,0h與4h和0h與8h處理組中,除pH=6.8組外,各組的紅細(xì)胞膜微黏度均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);0h與24h處理組中,各組的紅細(xì)胞膜微黏度有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);4h與8h處理組中,除pH為5.0和5.6組外各組的紅細(xì)胞膜微黏度有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);4h與24h處理組均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);8h與24h處理組中除pH為5.0和5.6組外均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。

圖3中,0h與4h、0h與8h、0h與24h、4h與8h、4h與24h和8h與24h處理組中,除pH=6.8組外,各組的游離血紅蛋白有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。

2.2紅細(xì)胞膜蛋白SDS-PAGE電泳分析

見圖4。

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圖4中,C為正常對照組,1和2為分別在pH 5.0保養(yǎng)液中處理8h和4h的實(shí)驗(yàn)組;3和4為分別在pH 6.2保養(yǎng)液中處理8h和4h的實(shí)驗(yàn)組;5和6為分別在pH6.8保養(yǎng)液中處理8h和4h的實(shí)驗(yàn)組。

2.3全血紅細(xì)胞胞外pH環(huán)境對細(xì)胞膜形態(tài)學(xué)的影響

顯微鏡下觀察的正常紅細(xì)胞,表面光滑,邊緣整齊。當(dāng)紅細(xì)胞胞外pH<6.8后,紅細(xì)胞膜形態(tài)發(fā)生改變,大部分表面棘狀突起有伸出,并伴隨有細(xì)胞的聚集,見圖5。

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3討論

紅細(xì)胞周圍環(huán)境pH值的變化可影響脂雙層的穩(wěn)定性和磷脂在細(xì)胞膜上的分布,可改變細(xì)胞膜的力學(xué)特性、細(xì)胞形態(tài)大小以及細(xì)胞內(nèi)Hb分子的結(jié)構(gòu)與濃度而影響紅細(xì)胞的功能和存活。研究證實(shí),紅細(xì)胞胞外酸堿度與細(xì)胞形態(tài)結(jié)構(gòu)、膜的變形能力和流動特性以及血紅蛋白的攜氧能力相互密切關(guān)聯(lián);Gedde報(bào)道紅細(xì)胞在胞外pH值低于6.3時(shí),紅細(xì)胞膜曲率為負(fù)數(shù),可對胞膜的力學(xué)特性及細(xì)胞形態(tài)產(chǎn)生影響。DPH被認(rèn)為是一種比較敏感的熒光探針,通過測定反映膜脂區(qū)域微黏度的熒光偏振度,可了解膜脂的流動性。我們利用DPH研究了不同pH值保養(yǎng)液和儲存時(shí)間對紅細(xì)胞熒光偏振度的影響,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,盡管沒有任何標(biāo)本發(fā)生肉眼可見的溶血,但pH在5.0~5.6范圍內(nèi),紅細(xì)胞的偏振度和微黏度顯著上升,流動性變小;紅細(xì)胞分別在pH6.2~pH7.4的保養(yǎng)液中,其偏振度和微黏度的變化基本相同;只有在pH6.8的保養(yǎng)液中,紅細(xì)胞才具有與正常對照組相同的偏振度和微黏度以及較好的流動性。

紅細(xì)胞正常形態(tài)的維持依賴于細(xì)胞膜及膜骨架的支持,因此細(xì)胞形態(tài)可以反映細(xì)胞膜的結(jié)構(gòu)和穩(wěn)定性的變化。當(dāng)紅細(xì)胞經(jīng)不同pH值環(huán)境和儲存時(shí)間處理后,部分紅細(xì)胞發(fā)生棘突和形態(tài)改變,聚集程度增加,而膜上的自聚集作用可能導(dǎo)致膜融合和形成非專一性離子通道,從而破壞細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)。另外,紅細(xì)胞膜流動性的降低,也可造成細(xì)胞膜的損害甚至溶血。紅細(xì)胞在不同pH值保養(yǎng)液中的儲存時(shí)間對其微黏度和流動性的影響是顯著的,通過研究與紅細(xì)胞膜的彈性特性相關(guān)的內(nèi)在性膜蛋白Band3的表達(dá),我們發(fā)現(xiàn)在低于pH6.8的儲存環(huán)境中,Band3的表達(dá)量隨著環(huán)境pH的降低和儲存時(shí)間的延長而顯著減少;而在pH 6.8的保養(yǎng)液中,Band3在4h內(nèi)的表達(dá)量與正常對照組基本相同。Band3為多次跨膜蛋白,具有陰離子轉(zhuǎn)運(yùn)功能,Band3和血型糖蛋白分別通過Band 2.1和Band4.1與收縮蛋白結(jié)合,使骨架網(wǎng)絡(luò)附著于膜脂雙層上形成膜骨架,低pH環(huán)境和保存時(shí)間的延長,導(dǎo)致Band3蛋白數(shù)量減少或被氧化、降解,與其他蛋白或自身交聯(lián)、構(gòu)型改變,骨架蛋白失去與膜內(nèi)表面的連接,紅細(xì)胞膜上的脂蛋白及脂質(zhì)逐漸喪失,使紅細(xì)胞膜的微黏度升高,膜流動性降低,紅細(xì)胞逐漸變形,脆性增加。因此,初步的研究結(jié)果表明,盡早將紅細(xì)胞從異常pH環(huán)境中分離出來,對于保證紅細(xì)胞的結(jié)構(gòu)和功能是非常必要的。

目前國內(nèi)外采供血機(jī)構(gòu)普遍使用ACD(pH 5.03),CPD(pH5.60)和CPDA(pH 5.60)保養(yǎng)液采集全血,由于不足量血的紅細(xì)胞與保養(yǎng)液的比例失調(diào),導(dǎo)致紅細(xì)胞的胞外pH值低于正常標(biāo)準(zhǔn),進(jìn)而影響紅細(xì)胞的能量代謝和生理功能。本研究的意義在于為進(jìn)一步探討不足量血紅細(xì)胞的百分比含量以及全血分離時(shí)間與紅細(xì)胞懸液質(zhì)量的關(guān)系,為不足量血潛在的綜合利用提供依據(jù),不僅可進(jìn)一步節(jié)約寶貴的血液資源,也體現(xiàn)了對無償獻(xiàn)血者的尊重,在目前血液供應(yīng)緊張的情況下,不失為一種開源節(jié)流、合理用血的應(yīng)對策略之一。

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