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失血性休克時紅細胞膜脂流動性及其相變溫度的變化

《第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報》1995年05期

陸松敏劉建倉郭素清王成英劉光海陳惠孫

【摘要】:

采用家兔失血性休克模型,測定紅細胞膜脂的流動性,膜脂區(qū)微粘度及相變溫度。

結(jié)果說明失血性休克后紅細胞膜的熒光偏振度(P)升高,從0.260±0.020升至0.289±0.015(P<0.01),膜流動性降低。膜脂雙層分子排列有序性增加。相變溫度傷前為17.5℃,低血壓3h后相變溫度為24.5℃,分子活化能升高。說明失血性休克后紅細胞膜從相對比較流動變?yōu)橄鄬袒毎じ呌谀z相。

【作者單位】:第三軍醫(yī)大學(xué)野戰(zhàn)外科研究所第二研究室

【關(guān)鍵詞】:休克失血性紅細胞膜膜流動性

【基金】:全軍“八五”攻關(guān)項目

細胞膜的流動性是一個細胞水平較為靈敏的檢測指標,它反映細胞膜脂區(qū)分子的運動狀態(tài)和分子排列的有序性,它是維持細胞正常生命活動所必需的。為了更好地從細胞和分子水平研究休克機理,我們研究了失血性休克條件下紅細胞膜的流動性、微粘度、膜脂區(qū)相變溫度、脂雙層分子排列有序性系數(shù)及分子運動所需活化能。

1材料和方法

采用體重2.5kg左右健康雄性家兔20只,分為對照組和失血性休克組,每組10只。采用改良Wigger’s模型,快速放血至5.3kPa,維持2h,然后繼續(xù)觀察至5h,分別于失血性休克前、低血壓后1、2、3、5h抽取靜脈血3ml,測定紅細胞膜脂流動性,微粘度(η)和脂分子排列有序性系數(shù)(r)。

2紅細胞膜的制備

全血3ml,300×g離心10min,去上清及界面白色膜、留壓積紅細胞。再用pH7.8~8.00 0.01 mol/L磷酸鹽緩沖生理鹽水溶液(PBS)洗3次(0~4℃),每次離心5min,轉(zhuǎn)速為300~g,得3ml PBS紅細胞懸液,以體積1:80的比例,用5mmol/L Tris-HCl(pH;7.5~7.6)緩沖液實行一次性溶血,于4℃靜置1~2h取出,以1000×g 4℃離心15min,反復(fù)洗滌離心4次得白色紅細胞膜,用Lowry法定蛋白。

取膜懸液(300μg/ml)3ml,加入2×10-6濃度的DPH(1.6-Dipheny-1、3、5 Hexatrine、Sigma、ChemicalCo)30μl,于25℃溫育30min,在MPF-4型熒光分光光度計上測定熒光偏振度(P),計算微粘度(η)和分子排列有序性系數(shù)(r)。測定時激發(fā)波長為365nm,發(fā)射波長為440nm。

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式中Ivv為起偏器光軸為垂直方向,檢偏器光軸為垂直方向時熒光強度,IvH為起偏器光軸為垂直方向,檢偏器光軸為水平方向時熒光強度。G為校正因子,G=IHV-HV/IHH,IHV為起偏器光的水平向、檢偏器垂直向時熒光強度。IHH:二者均為水平向。

膜相變溫度的測定采用熒光偏振法:將已用DPH標記好的紅細胞膜懸液,置0℃冰浴后,從0℃至45℃每升高5℃測定一次熒光偏振度,再以log(P)對1/T作圖,其曲線的拐點即紅細胞膜的相變溫度。

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3實驗結(jié)果

3.1失血性休克對紅細胞膜流動性、膜脂區(qū)微粘度(η)及脂雙層分子排列有序性系數(shù)(r)的影響

在失血性休克低血壓2h后紅細胞膜熒光偏振度升高(P<0.01),膜流動性降低,微粘度顯著升高(P<0.01),脂雙層分子排列有序性增加(P<0.01)。隨著休克時間的延長脂分子排列更有序,分子運動減少。三者變化關(guān)系基本平行(表1)。

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3.2失血性休克時紅細胞膜相變溫度的變化

傷前、失血性休克后2、3、5h紅細胞膜在不同溫度下的熒光偏振度(P)變化見表2。以logp對1/T作圖,曲線的拐點即為相變溫度.結(jié)果為:傷前紅細胞膜相變溫度為17.5℃,失血性休克后2h為21℃,3h為24.5℃,5h為25.0℃。說明失血性休克后紅細胞膜分子結(jié)構(gòu)和化學(xué)組成發(fā)生了變化。

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4討論

細胞膜的流動性指細胞膜、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜、線粒體膜系統(tǒng)具有類似于液體那樣容易流動的一種物理性質(zhì)。1972年Singer和Nicolgon提出細胞膜的結(jié)構(gòu)的液態(tài)鑲嵌模型,即膜中脂和蛋白質(zhì)分子處于不停息的運動中,從而使膜處于一種動態(tài)結(jié)構(gòu)中。這些運動和溫度有關(guān)。所以在不同溫度下膜擴散速度和旋轉(zhuǎn)速度及烴鏈的活動均不同,使得膜在高溫下更接近液態(tài),而在低溫下更接近固態(tài),兩種狀態(tài)的轉(zhuǎn)折點稱之為相變溫度。

細胞膜的流動性和通透性是細胞的基本和重要的生物物理性質(zhì),膜流動性不僅能影響膜通透,且影響膜上的酶的活性、受體功能及能量傳遞,也影響細胞膜的保護功能。膜流動性反映著膜磷脂的分子運動狀態(tài),包括側(cè)向擴散,繞分子長軸的旋轉(zhuǎn)、異構(gòu)運動和翻轉(zhuǎn)運動。流動性是脂雙層中磷脂分子各種運動狀態(tài)的總和的平均表現(xiàn)。流動性越大,則意味著磷脂分子的活動度增大。

膜流動性可用核磁共振,電子自旋共振,熒光偏振等方法來測定。本研究采用穩(wěn)態(tài)熒光偏振法,因為DPH能嵌于脂雙層中和磷脂分子平行排列,烴鏈不活動,則DPH排列整齊,熒光偏振度大,膜流動性小;如果分子運動大,脂分子呈不同程度的傾斜,則熒光偏振度小,流動性就越大。

影響膜流動性的因素很多,從構(gòu)成膜的磷脂和蛋白質(zhì)來看;磷脂分子中脂肪酸鏈的不飽和程度,脂與脂、脂和蛋白質(zhì)之間的相互作用均十分重要。膜磷脂的化學(xué)組成、不飽和程度、脂肪鏈的長短均起作用。Orly和Sehram報告減少不飽和程度,增加鏈長均可減少膜流動性。磷脂中不飽和脂肪酸和飽和脂肪酸比值越高,則膜流動性就越大。此外膜脂的構(gòu)型、酸堿、氧張力、乙醇胺等對流動性均有影響。

磷脂酰膽堿和磷脂酰乙醇胺均是天然哺乳動物生物膜的主要成份。Hirata和Axelrod報告磷脂酰乙醇胺甲基化形成磷脂酰膽堿,從而增加膜流動性。休克時膜成份分析指出:肝細胞膜中磷脂酰膽堿較多地被水解,而磷脂酰乙醇胺水解較少。磷脂酰膽堿含量下降,所以流動性下降,相變溫度升高。

磷脂酶A2(PLA2)在許多生化過程中和細胞膜改變中是一個關(guān)鍵性的酶,是休克的重要啟動因子。外源性PLA2和嵌于細胞膜深層的PLA2對細胞膜流動性起重要調(diào)控作用,調(diào)節(jié)著膜結(jié)構(gòu),改變膜流動性。外源性PLA2能消化細胞膜,水解不飽和脂肪酸的C-2位,從而增加飽脂肪酸/不飽和脂肪酸之比,故此改變流動性,使細胞膜從相對地流動變得權(quán)對固體化。Liu-Maw-Shung等指出PLA2激活是內(nèi)毒素休克的重要機制之一。我們的實驗已證明失血性休克、內(nèi)毒素休克時,血漿、肝、心、腸中PLA2顯著升高。

本實驗結(jié)果說明;失血性休克早期和晚期細胞膜流動性降低,膜相變溫度升高與分子排列有序性增加和分子活化能升高有關(guān)。細胞膜從相對較流動變得更趨于凝膠相。造成膜流動性變化的原因可能與磷脂酶激活、膜脂成份改變、不飽和脂肪酸水解、不飽和脂肪酸/飽和脂肪酸之比改變有關(guān)。Stark等指出:磷脂成份變化主要原因是花生四烯酸及大量脂介質(zhì)的釋放,如溶血性磷脂酰膽鹼、血小板激活因子、烷酸類、白三烯等大量不飽和脂肪酸釋放于脂肪池從而影響膜的流動性。

在休克時膜的蛋白和脂肪酸上的NH2可與脂質(zhì)過氧化物丙二醛交聯(lián),使流動性下降。同時不飽和脂肪酸氧化后,不飽和鍵大量減少,膜脂相凝固點相對升高,流動性降低,相變溫度升高。Petkova等證明膜流動性與膜上內(nèi)源性PLA2呈負相關(guān),即膜的硬化可激活內(nèi)源性PLA2。同時又指出:改變脂質(zhì)體的脂成份就改變了膜的流動性。影響細胞膜流動性的因素很多,各種細胞毒素因子的調(diào)控作用、?;D(zhuǎn)移與基因表達的關(guān)系等均待進一步深入研究。

實驗證明決定低血容量休克復(fù)蘇后的存活率和存活時間的因素之一是休克狀態(tài)持續(xù)的時間。嚴重創(chuàng)傷出血后前1個小時之后活存率明顯下降。前1小時被稱為“黃金小時”。朝鮮和越南戰(zhàn)爭的經(jīng)驗使軍醫(yī)相信這段時間是關(guān)鍵時刻,而本實驗報告了失血性休克后紅細胞膜生物物理參數(shù)的變化,說明休克后細胞膜流動性下降、細胞膜從相對比較流動變得比較固化,紅細胞膜更趨于凝膠相。分子排列有序性增加,電子活化能升高,電子在能級間傳遞和躍遷困難。同時流動性改變也必然影響到膜上酶、受體等的功能。這與休克的發(fā)生發(fā)展有關(guān)。本實驗中細胞膜的流動性和膜脂相變溫度在失血性休克后1h無顯著改變,2h后產(chǎn)生了顯著改變,提示了以上臨床改變的分子生物學(xué)基礎(chǔ)。

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